CHIP引物設(shè)計結(jié)果分析
來源/作者:普拉特澤-生物醫(yī)學(xué)整體課題外包平臺
染色質(zhì)免疫共沉淀(Chromatin Immunoprecipitation,ChIP)技術(shù)是一種研究蛋白質(zhì)與DNA相互作用的重要方法。在ChIP實驗中,特定的蛋白質(zhì)與DNA結(jié)合的區(qū)域會被抗體“拉下來”
然后通過PCR、測序等方法來鑒定這些綁定的DNA區(qū)域。
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成功的ChIP實驗不僅依賴于高質(zhì)量的抗體和樣本制備,還需要合理的引物設(shè)計。本文將詳細介紹ChIP引物設(shè)計的過程和結(jié)果分析。
一、ChIP引物設(shè)計原則
?①目標基因或DNA區(qū)域的選擇?:
ChIP引物的設(shè)計首先需要確定目標基因或DNA區(qū)域。這通?;陬A(yù)測軟件如JASPAR、ENCODE的預(yù)測結(jié)果,或先前的研究數(shù)據(jù)。
②結(jié)合位點的預(yù)測?:
利用生物信息學(xué)工具預(yù)測蛋白質(zhì)可能結(jié)合的DNA序列,確保引物能夠特異性地擴增目標區(qū)域。預(yù)測結(jié)果可以為引物設(shè)計提供重要參考。
③引物設(shè)計?:
?產(chǎn)物長度?:ChIP-qPCR實驗中,設(shè)計引物擴增出來的片段最好在100-150 bp之間。這是因為如果產(chǎn)物過長,在ChIP過程中超聲處理可能會將DNA打斷得太短,導(dǎo)致無法驗證。
?熔解溫度(Tm)?:優(yōu)化引物的熔解溫度,確保PCR反應(yīng)的效率和特異性。
?GC含量?:適當調(diào)節(jié)GC含量,避免引物二級結(jié)構(gòu)的形成。
④BLAST驗證?:
使用BLAST工具(如NCBI的Primer-BLAST)驗證引物的特異性,確保它們不會擴增出其他非目標DNA區(qū)域。
二、ChIP引物設(shè)計實例
假設(shè)我們已經(jīng)有高通量的ChIP-seq結(jié)果,需要根據(jù)測序結(jié)果設(shè)計引物。以下是具體步驟:
?【1】獲取DNA序列?:
通過UCSC基因組瀏覽器獲取目標位置的DNA序列。選擇相應(yīng)的基因組版本(如hg38),輸入序列位置,即可獲得所需的DNA序列。
【2】設(shè)計引物?:
在Primer-BLAST中粘貼DNA序列,設(shè)置PCR模板長度(如250 bp),調(diào)整C、G比例,然后按照正常設(shè)計引物的步驟進行。
【3】驗證引物?:
使用UCSC-BLAST工具驗證引物的特異性。選擇目標區(qū)域(編碼區(qū)或非編碼區(qū)),查看BLAST結(jié)果,確保引物只擴增目標DNA區(qū)域。
三、ChIP引物設(shè)計結(jié)果分析
?▲引物特異性?:
通過BLAST驗證,確保設(shè)計的引物具有高度的特異性,不會擴增出其他非目標DNA區(qū)域。這是ChIP實驗成功的關(guān)鍵之一。
▲PCR驗證?:
在含有目標DNA的模板和不含目標DNA的負對照樣本上進行PCR驗證,進一步確認引物的特異性。
?▲ChIP-qPCR結(jié)果分析?:
?●標準曲線的建立?:
通過稀釋不同比例的Input樣本建立qPCR標準曲線,確定PCR反應(yīng)效率。
?●富集效率的計算?:ChIP-qPCR的富集效率通常以相對Input信號的富集比例來呈現(xiàn)。計算公式如:% of Input = (2^(-ΔΔCt)) × 100%,其中ΔΔCt為實驗樣本與Input樣本的CT值之差。
?●結(jié)果分析?:比較陽性對照、陰性對照及目的蛋白組的富集豐度,根據(jù)CST科學(xué)家給出的質(zhì)控標準,判斷ChIP結(jié)果是否為真陽性。
四、結(jié)論
ChIP引物設(shè)計是ChIP實驗成功的關(guān)鍵步驟之一。通過合理的引物設(shè)計,可以確保ChIP實驗?zāi)軌蛱禺愋缘財U增目標DNA區(qū)域,從而準確研究蛋白質(zhì)與DNA的相互作用。
在引物設(shè)計過程中,需要綜合考慮目標基因的信息、生物信息學(xué)預(yù)測、引物設(shè)計原則以及實驗驗證結(jié)果。最終,通過ChIP-qPCR結(jié)果的分析,可以進一步驗證引物的特異性和實驗的可靠性。
好,今天關(guān)于CHIP引物設(shè)計
結(jié)果分析
就說到這里
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