Tunel染色實驗的常見問題與解決方法【細(xì)胞凋亡檢測】
來源/作者:普拉特澤-病理染色技術(shù)平臺
大家好,今天普拉特澤生物跟大家一起學(xué)習(xí)的是TUNEL染色實驗的常見問題與解決方法。普拉特澤生物—病理實驗平臺承接了大量的TUNEL檢測細(xì)胞凋亡代測實驗與技術(shù)咨詢服務(wù),同時在實操過程中也遇到了很多特殊的實驗結(jié)果,今天小編就把普拉特澤生物技術(shù)在用TUNEL檢測細(xì)胞凋亡時遇到的各種問題極其解決方法總結(jié)給大家,希望能在實驗的操作中給到大家一定的幫助!
問題一、熒光信號弱或沒有熒光信號
原因1:樣本處理不當(dāng)
(1)樣本切片太厚。建議適當(dāng)將切片切薄一點,便于染色。
(2)脫蠟和水化不充分。建議脫蠟先60 oC 20 min,再使用二甲苯兩次5-10 min;而水化用梯度乙醇從高到低濃度浸洗。
(3)Proteinase K的孵育時間過短。優(yōu)化Proteinase K的孵育時間,常用時間10-30 min。4 μm左右的片子孵育10 min,30μm左右的片子孵育30 min。
(4)Proteinase K濃度過低。建議蛋白酶K一般工作液濃度為20 μg/mL。
(5)放置在-20 oC保存較長時間的切片不新鮮,減低染色效率。建議使用新鮮切片。
原因2:染色操作不當(dāng)
(1)染色時間過短。建議一般 37 °c 孵育60 min,可以根據(jù)凋亡損傷程度,可長至2 h,但要結(jié)合背景著色。
(2)TdT酶或熒光素/酶標(biāo)記的dUTP濃度過低。建議適當(dāng)提高TdT酶或熒光素/酶標(biāo)記的dUTP濃度。
(3)TdT酶失活。建議TUNEL反應(yīng)液臨用前配制,短時間在冰上保存。不宜長期保存,長期保存會導(dǎo)致TdT酶失活。
(4)樣本干燥。加上TUNEL反應(yīng)液后,請蓋上蓋玻片/保鮮膜/濕盒中進(jìn)行,保證樣本均勻染色,又可防止反應(yīng)液干燥。
原因3:熒光檢測操作不當(dāng)
主要是因為操作未避光。由于熒光易碎滅,建議標(biāo)記與檢測樣本時,載玻片要避光,觀察時要盡量快。
問題二、非特異性染色(假陽性高)
原因1:樣本處理不當(dāng)
(1)使用酸性或堿性固定液,導(dǎo)致DNA損傷。建議使用pH中性的固定液固定組織或者細(xì)胞。
(2)固定液濃度過高,導(dǎo)致細(xì)胞自溶、DNA鏈不規(guī)則斷裂、造成假陽性。建議使用4%多聚甲醛溶液(溶于PBS)。
(3)固定時間過長,導(dǎo)致細(xì)胞自溶、DNA鏈不規(guī)則斷裂、造成假陽性。建議控制固定時間在4 ℃放置25 min。
(4)蛋白酶K處理時間過長,破壞核酸結(jié)構(gòu),出現(xiàn)假陽性。建議適當(dāng)縮短處理時間。
(5)蛋白酶K濃度過大,破壞核酸結(jié)構(gòu),出現(xiàn)假陽性。建議適當(dāng)調(diào)整蛋白酶K溶液濃度,一般工作液濃度為20 μg/mL。
原因2:染色操作不當(dāng)
(1)TUNEL染色時間過長。建議一般是 37 °c 孵育60 min,可以根據(jù)凋亡損傷程度,可長至2 h,但要結(jié)合背景著色。
(2)未充分清洗樣本。染色后PBS清洗次數(shù)可增加到5次,來避免切片的非特異性染色。
問題三、熒光背景強(qiáng)
原因1:樣本操作不當(dāng)
(1)TUNEL染色時間過長。建議染色時間適當(dāng),一般是 37 °c孵育60 min,避免串色。
(2)TUNEL染色液濃度過大。建議增大稀釋倍數(shù),優(yōu)化濃度。
(3)PBS未充分清洗樣本。在TUNEL反應(yīng)后PBS清洗次數(shù)可增加到5次,來避免切片樣本中殘留的染料。
原因2:熒光檢測操作不當(dāng)
曝光時間過長。建議調(diào)整曝光條件,先對陰性組調(diào)整到無背景光,然后用這個曝光條件去拍攝實驗組(可以微調(diào),但是不需要大調(diào))。
好啦,那TUNEL染色的幾個常見問題咱們就介紹到這里啦,您還有遇到其他的問題,歡迎給我們留言,我們會回答后加到這片文章中跟大家一起學(xué)習(xí)哦!
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