免疫組化(IHC)染色常見問題及其解決方法 上【附視頻教程】
來源/作者:普拉特澤-生物醫(yī)學(xué)整體課題外包平臺
今天普拉特澤生物跟大家一起學(xué)習(xí)的是免疫組化(IHC)常見問題及其解決方法。免疫組化(IHC)染色是一項(xiàng)基礎(chǔ)研究實(shí)驗(yàn),雖然其總體實(shí)驗(yàn)難度較低,但是忽略的細(xì)節(jié)容易讓結(jié)果出現(xiàn)各種各樣的問題。今天病理平臺的技術(shù)就跟大家來盤一盤,我們承接免疫組化/IHC代做時出現(xiàn)過的問題及其解決方法。總是遇到各種問題的實(shí)驗(yàn)小白可以學(xué)習(xí)閃避很多實(shí)驗(yàn)和各種常見問題。
免疫組化問題一:無信號-陰性結(jié)果
1、真陰性結(jié)果:組織或細(xì)胞不表達(dá)抗原,無法檢測到相應(yīng)信號;或抗原表達(dá)量太低,無法檢測到相關(guān)信號。
2、假陰性結(jié)果
(1)染色前錯誤:切片時選錯蠟塊或拿錯切片,這種情況可用H&E染色驗(yàn)證。
(2)染色操作錯誤:
①確認(rèn)是否忽略了應(yīng)加的某種試劑,包括抗抗、底物等。
②確認(rèn)所有的試劑是否按正確的順序加入,是否在足夠的溫度條件下滿足足夠的時間。
③復(fù)查抗體的標(biāo)簽確認(rèn)是否使用了正確的抗體,以及所用的檢測系統(tǒng)是否和一抗四配。
④檢查抗體的有效期和保存條件,尤其是標(biāo)記了酶或熒光素的抗體。
⑤檢查抗體稀釋比及所使用的抗體稀釋液是否合適。
⑥確定組織或細(xì)胞標(biāo)本的儲存條件。
⑦檢查底物溶液,最簡單的檢測方法是將一滴標(biāo)記有的抗體加入到制備好的底物溶液中,如果底物發(fā)生預(yù)期的顏色變化,則可排除底物的因素。需要注意的是,有些
底物在制成工作液后應(yīng)在一定時間內(nèi)用完,否則會失效。
⑧檢查沖洗液是否和反應(yīng)試劑匹配,沖洗液的pH值也很重要,與過氧化物酶底物適配的溶液中不應(yīng)含有疊氮鈉。
⑨檢查復(fù)染、脫水、透明和封片劑是否和所使用的色原匹配。熒光素染色封片要選用水溶性封片劑,AEAPRed/FastRed和其它水溶性染料不能用二甲苯有機(jī)溶劑透明。
問題二:信號弱一弱陽性結(jié)果
如果陰性對照沒有染色而陽性對照標(biāo)本陽性強(qiáng)度較弱,除了考慮上述因素外,還應(yīng)考慮:
1、標(biāo)本的固定方式:固定劑不適當(dāng),固定時間過長或過短,固定溫度過高,都會影響到所檢測的抗原數(shù)量和質(zhì)量。
2、抗原修復(fù)方式不當(dāng):由于石蠟切片在制作的過程中固定劑對抗原的封閉作用,大部分抗體在做免疫組化時需用抗原熱修復(fù)或酶消化等方法使抗原暴露,至于使用哪一種方法,應(yīng)參照試劑生產(chǎn)廠家的說明,同時結(jié)合標(biāo)本的具體情況而定。同時亦須注意,小部分抗體在進(jìn)行免疫組化實(shí)驗(yàn)時是不需要進(jìn)行抗原修復(fù)操作的,如果進(jìn)行了抗原修復(fù)操作反而可能會使陽性著色減弱。
3、第一抗體效價太低或被過度稀釋,或者孵音的溫度/時間不合適也可導(dǎo)致弱陽性結(jié)果。一般試劑生產(chǎn)廠家都會對試劑給出一定的使用范圍,但是由于使用者的標(biāo)本來自各種組織,處理過程也不盡相同,所以應(yīng)參照使用范圍,對所使用的一抗進(jìn)行梯度測試,找出最佳的使用濃度。
4、切片上如遺留了過多的沖洗液,當(dāng)抗體加至切片上時,等于人為地對抗體進(jìn)行了進(jìn)一步的稀釋。
5、孵育時切片是否水平放置,否則會導(dǎo)致抗體流失。
好了,免疫組化的常見問題及其解決方法上篇咱們就講完啦,想要深入學(xué)習(xí)的朋友可以點(diǎn)擊《免疫組化/IHC 理論+實(shí)操》 來學(xué)習(xí)理論和實(shí)操,還有更多的免疫組化常見問題我們來看看《免疫組化/IHC常見問題及其解決方法(下)》,也歡迎大家留言分享自己在做免疫組化實(shí)驗(yàn)時遇到的問題和摸索出來的解決方法分享學(xué)習(xí)哦,咱們下篇見!